Formiranje cirkulacije i odliv cerebrospinalne tečnosti. Likerski sistem mozga. Pia mater mozga

Liquor- Ovo cerebrospinalnu tečnost sa složenom fiziologijom, kao i mehanizmima formiranja i resorpcije.

To je predmet proučavanja takve nauke kao što je.

Jedan homeostatski sistem kontroliše cerebrospinalnu tečnost koja okružuje nerve i glijalne ćelije u mozgu i održava njenu hemiju relativno konstantnom u poređenju sa hemijom krvi.

Postoje tri vrste tečnosti u mozgu:

  1. krv, koji cirkuliše u širokoj mreži kapilara;
  2. cerebrospinalna tečnost - cerebrospinalna tečnost;
  3. međućelijska tečnost, koji su široki oko 20 nm i slobodno su otvoreni za difuziju nekih jona i velikih molekula. Ovo su glavni kanali kroz koje hranljive materije stižu do neurona i glijalnih ćelija.

Homeostatsku kontrolu obezbeđuju endotelne ćelije moždanih kapilara, epitelne ćelije horoidnog pleksusa i arahnoidne membrane. Veza između cerebrospinalne tekućine može se predstaviti na sljedeći način (vidi dijagram).

Povezano:

  • krvlju(direktno kroz pleksuse, arahnoidnu membranu itd. i indirektno kroz ekstracelularnu tečnost mozga);
  • sa neuronima i glijom(indirektno kroz ekstracelularnu tečnost, ependimu i pia mater, a na nekim mestima i direktno, posebno u trećoj komori).

Formiranje cerebrospinalne tečnosti (CSF)

CSF se formira u horoidnim pleksusima, ependimu i moždanom parenhimu. Kod ljudi, horoidni pleksusi čine 60% unutrašnje površine mozga. Poslednjih godina je dokazano da je glavno mesto porekla likvora horoidni pleksus. Faivre je 1854. godine prvi sugerirao da su horoidni pleksusi mjesto formiranja cerebrospinalne tekućine. Dandy i Cushing su to eksperimentalno potvrdili. Dandy je prilikom uklanjanja horoidnog pleksusa u jednoj od lateralnih komora otkrio novi fenomen - hidrocefalus u komori sa očuvanim pleksusom. Schalterbrand i Putman su uočili oslobađanje fluoresceina iz pleksusa nakon intravenske primjene ovog lijeka. Morfološka struktura horoidnih pleksusa ukazuje na njihovo učešće u formiranju cerebrospinalne tekućine. Mogu se uporediti sa strukturom proksimalnih dijelova tubula nefrona, koji luče i apsorbiraju različite tvari. Svaki pleksus je visoko vaskularizirano tkivo koje se proteže u odgovarajuću komoru. Horoidni pleksusi potiču iz pia mater mozga i krvnih sudova subarahnoidalnog prostora. Ultrastrukturni pregled pokazuje da se njihova površina sastoji od velikog broja međusobno povezanih resica, koje su prekrivene jednim slojem kubičnih epitelnih ćelija. Oni su modifikovani ependim i nalaze se na vrhu tanke strome kolagenih vlakana, fibroblasta i krvnih sudova. Vaskularni elementi uključuju male arterije, arteriole, velike venske sinuse i kapilare. Protok krvi u pleksusima je 3 ml/(min*g), odnosno 2 puta brži nego u bubrezima. Endotel kapilara je retikularan i po strukturi se razlikuje od endotela moždanih kapilara na drugim mjestima. Epitelne vilozne ćelije zauzimaju 65-95% ukupnog volumena ćelije. Imaju strukturu sekretornog epitela i dizajnirani su za transcelularni transport otapala i otopljenih tvari. Epitelne ćelije su velike, sa velikim centralno lociranim jezgrima i skupljenim mikroresicama na apikalnoj površini. Sadrže oko 80-95% ukupnog broja mitohondrija, što uzrokuje veliku potrošnju kisika. Susjedne koroidne epitelne stanice međusobno su povezane zbijenim kontaktima, u kojima se nalaze poprečno smještene ćelije, čime se ispunjava međućelijski prostor. Ove bočne površine blisko raspoređenih epitelnih ćelija na apikalnoj strani povezane su jedna s drugom i formiraju "pojas" u blizini svake ćelije. Formirani kontakti ograničavaju prodor velikih molekula (proteina) u cerebrospinalnu tekućinu, ali mali molekuli slobodno prodiru kroz njih u međućelijske prostore.

Ames i saradnici su ispitivali tečnost izvučenu iz horoidnih pleksusa. Rezultati do kojih su došli autori još jednom su dokazali da su horoidni pleksusi lateralne, treće i četvrte komore glavno mjesto formiranja likvora (od 60 do 80%). Cerebrospinalna tečnost se može pojaviti i na drugim mjestima, kao što je Weed sugerirao. Nedavno je ovo mišljenje potvrđeno i novim podacima. Međutim, količina takve cerebrospinalne tekućine je mnogo veća od one koja se stvara u horoidnim pleksusima. Postoji dovoljno dokaza koji podržavaju stvaranje cerebrospinalne tekućine izvan horoidnog pleksusa. Oko 30%, a prema nekim autorima i do 60% likvora se nalazi izvan horoidnih pleksusa, ali tačna lokacija njenog formiranja ostaje predmet rasprave. Inhibicija enzima karboanhidraze acetazolamidom u 100% slučajeva zaustavlja stvaranje cerebrospinalne tečnosti u izolovanim pleksusima, ali in vivo njena efikasnost je smanjena na 50-60%. Posljednja okolnost, kao i isključenje stvaranja likvora u pleksusima, potvrđuje mogućnost pojave likvora izvan horoidnih pleksusa. Izvan pleksusa, cerebrospinalna tečnost se proizvodi prvenstveno na tri mesta: pijalne krvne žile, ependimalne ćelije i cerebralna intersticijska tečnost. Učešće ependima je vjerovatno neznatno, o čemu svjedoči i njegova morfološka struktura. Glavni izvor formiranja likvora izvan pleksusa je moždani parenhim sa svojim kapilarnim endotelom, koji čini oko 10-12% cerebrospinalne tekućine. Da bi se potvrdila ova pretpostavka, proučavani su ekstracelularni markeri, koji su nakon unošenja u mozak pronađeni u komorama i subarahnoidnom prostoru. Oni su prodirali u ove prostore bez obzira na masu svojih molekula. Sam endotel je bogat mitohondrijama, što ukazuje na aktivan metabolizam koji proizvodi energiju potrebnu za ovaj proces. Ekstrahoroidalna sekrecija također objašnjava nedostatak uspjeha vaskularne pleksusektomije za hidrocefalus. Uočava se prodiranje tečnosti iz kapilara direktno u ventrikularni, subarahnoidalni i međućelijski prostor. Injekcija primijenjena intravenozno dospijeva u cerebrospinalnu tekućinu bez prolaska kroz pleksuse. Izolovane pijalne i ependimalne površine proizvode tekućinu sličnu po hemijskom sastavu likvoru. Nedavni dokazi sugeriraju da je arahnoidna membrana uključena u ekstrahoroidalnu formaciju cerebrospinalne tekućine. Postoje morfološke, a vjerovatno i funkcionalne razlike između horoidnih pleksusa lateralne i četvrte komore. Smatra se da se oko 70-85% likvora pojavljuje u horoidnim pleksusima, a ostatak, odnosno oko 15-30%, u moždanom parenhimu (moždane kapilare, kao i voda nastala tokom metabolizma).

Mehanizam stvaranja cerebrospinalne tečnosti (CSF)

Prema teoriji sekrecije, cerebrospinalna tekućina je produkt lučenja horoidnih pleksusa. Međutim, ova teorija ne može objasniti odsustvo specifičnog hormona i neefikasnost djelovanja nekih stimulansa i inhibitora endokrinih žlijezda na pleksuse. Prema teoriji filtracije, cerebrospinalna tekućina je običan dijalizat, odnosno ultrafiltrat krvne plazme. Objašnjava neka opšta svojstva cerebrospinalne tečnosti i intersticijske tečnosti.

U početku se mislilo da je ovo jednostavna filtracija. Kasnije je otkriveno da su brojni biofizički i biohemijski obrasci bitni za formiranje cerebrospinalne tekućine:

  • osmoza,
  • balans Donna,
  • ultrafiltracija itd.

Biohemijski sastav likvora najuvjerljivije potvrđuje teoriju filtracije u cjelini, odnosno da je cerebrospinalna tekućina samo filtrat plazme. Liker sadrži velike količine natrijuma, hlora i magnezijuma i niske količine kalijuma, kalcijum bikarbonata, fosfata i glukoze. Koncentracija ovih supstanci zavisi od lokacije cerebrospinalne tečnosti, budući da postoji kontinuirana difuzija između mozga, ekstracelularne tečnosti i cerebrospinalne tečnosti dok ova druga prolazi kroz komore i subarahnoidalni prostor. Sadržaj vode u plazmi je oko 93%, au cerebrospinalnoj tečnosti - 99%. Odnos koncentracije cerebrospinalna tečnost/plazma za većinu elemenata značajno se razlikuje od sastava ultrafiltrata plazme. Sadržaj proteina, određen Pandey reakcijom u cerebrospinalnoj tekućini, iznosi 0,5% proteina plazme i mijenja se sa godinama prema formuli:

23,8 X 0,39 X starost ± 0,15 g/l

Lumbalni likvor, kako pokazuje Pandeyeva reakcija, sadrži skoro 1,6 puta više ukupnih proteina od ventrikula, dok likvor cisterni ima 1,2 puta više ukupnih proteina od ventrikula, respektivno:

  • 0,06-0,15 g/l u komorama,
  • 0,15-0,25 g/l u cerebelomedularnim cisternama,
  • 0,20-0,50 g/l u lumbalnom dijelu.

Smatra se da je visok nivo proteina u kaudalnom delu posledica priliva proteina plazme, a ne dehidracije. Ove razlike se ne odnose na sve vrste proteina.

Odnos cerebrospinalne tečnosti/plazme za natrijum je oko 1,0. Koncentracija kalijuma, a prema nekim autorima i hlora, opada u pravcu od ventrikula ka subarahnoidnom prostoru, a koncentracija kalcijuma, naprotiv, raste, dok koncentracija natrijuma ostaje konstantna, iako postoje suprotna mišljenja. . pH cerebrospinalne tečnosti je nešto niži od pH plazme. Osmotski pritisak likvora, plazme i ultrafiltrata plazme u normalnom stanju je veoma blizu, čak izotoničan, što ukazuje na slobodnu ravnotežu vode između ove dve biološke tečnosti. Koncentracija glukoze i aminokiselina (npr. glicina) je vrlo niska. Sastav cerebrospinalne tekućine ostaje gotovo konstantan s promjenama koncentracije u plazmi. Tako sadržaj kalijuma u likvoru ostaje u granicama 2-4 mmol/l, dok u plazmi njegova koncentracija varira od 1 do 12 mmol/l. Pomoću mehanizma homeostaze održavaju se na konstantnom nivou koncentracije kalijuma, magnezijuma, kalcijuma, AA, kateholamina, organskih kiselina i baza, kao i pH. Ovo je od velike važnosti, jer promjene u sastavu likvora dovode do poremećaja u aktivnosti neurona i sinapsi centralnog nervnog sistema i mijenjaju normalne funkcije mozga.

Kao rezultat razvoja novih metoda za proučavanje likvora (ventrikulocisternalna perfuzija in vivo, izolacija i perfuzija horoidnih pleksusa in vivo, ekstrakorporalna perfuzija izolovanog pleksusa, direktno sakupljanje tečnosti iz pleksusa i njena analiza, kontrast radiografijom, određivanjem pravca transporta rastvarača i rastvorenih materija kroz epitel) pojavila se potreba da se razmotre pitanja vezana za formiranje cerebrospinalne tečnosti.

Kako treba posmatrati tečnost koju formira horoidni pleksus? Kao jednostavan filtrat plazme, koji nastaje kao rezultat transependimalnih razlika u hidrostatskom i osmotskom pritisku, ili kao specifična složena sekrecija ćelija ependimalnih vila i drugih ćelijskih struktura, koja je rezultat trošenja energije?

Mehanizam lučenja tečnosti je prilično složen proces, i iako su mnoge njegove faze poznate, još uvek postoje neotkrivene veze. Aktivni vezikularni transport, olakšana i pasivna difuzija, ultrafiltracija i drugi vidovi transporta igraju ulogu u formiranju likvora. Prvi korak u formiranju likvora je prolazak ultrafiltrata plazme kroz kapilarni endotel, u kojem nema zatvorenih kontakata. Pod uticajem hidrostatskog pritiska u kapilarama koje se nalaze na bazi horoidalnih resica, ultrafiltrat ulazi u okolno vezivno tkivo ispod viloznog epitela. Pasivni procesi ovdje igraju određenu ulogu. Sljedeća faza u formiranju cerebrospinalne tekućine je transformacija nadolazećeg ultrafiltrata u sekret koji se zove cerebrospinalna tekućina. U ovom slučaju, aktivni metabolički procesi su od velike važnosti. Ponekad je ove dvije faze teško odvojiti jedna od druge. Pasivna apsorpcija iona događa se uz sudjelovanje ekstracelularnog ranžiranja u pleksuse, odnosno kroz kontakte i bočne međućelijske prostore. Osim toga, opaža se pasivno prodiranje neelektrolita kroz membrane. Poreklo ovih poslednjih u velikoj meri zavisi od njihove rastvorljivosti u lipidima/vodi. Analiza podataka pokazuje da permeabilnost pleksusa varira u veoma širokom rasponu (od 1 do 1000*10-7 cm/s; za šećere - 1,6*10-7 cm/s, za ureu - 120*10-7 cm/s cm/s, za vodu 680*10-7 cm/s, za kofein - 432*10-7 cm/s, itd.). Voda i urea brzo prodiru. Brzina njihovog prodiranja ovisi o omjeru lipid/voda, što može utjecati na vrijeme koje je potrebno ovim molekulima da prodru u lipidnu membranu. Šećeri putuju ovim putem kroz takozvanu olakšanu difuziju, koja pokazuje određenu ovisnost o hidroksilnoj grupi u molekulu heksoze. Do danas nema podataka o aktivnom transportu glukoze kroz pleksuse. Niska koncentracija šećera u cerebrospinalnoj tekućini objašnjava se visokom stopom metabolizma glukoze u mozgu. Aktivni transportni procesi protiv osmotskog gradijenta su od velike važnosti za formiranje cerebrospinalne tečnosti.

Davsonovo otkriće činjenice da je kretanje Na+ iz plazme u cerebrospinalnu tečnost jednosmjerno i izotonično s nastalom tekućinom postalo je opravdano kada se razmatraju procesi sekrecije. Dokazano je da se natrijum aktivno transportuje i da je osnova za proces lučenja cerebrospinalne tečnosti iz horoidnih pleksusa. Eksperimenti sa specifičnim ionskim mikroelektrodama pokazuju da natrijum ulazi u epitel zbog postojećeg gradijenta elektrohemijskog potencijala od približno 120 mmol preko bazolateralne membrane epitelne ćelije. Zatim se kreće od ćelije do ventrikula protiv gradijenta koncentracije kroz apikalnu ćelijsku površinu pomoću natrijeve pumpe. Potonji je lokaliziran na apikalnoj površini stanica zajedno s adenilciklonitrogenom i alkalnom fosfatazom. Oslobađanje natrijuma u ventrikule nastaje kao rezultat prodiranja vode tamo zbog osmotskog gradijenta. Kalij se kreće u smjeru od cerebrospinalne tekućine do epitelnih stanica protiv gradijenta koncentracije uz utrošak energije i uz sudjelovanje kalijeve pumpe, također smještene na apikalnoj strani. Mali dio K+ tada se pasivno kreće u krv, zbog gradijenta elektrohemijskog potencijala. Kalijumova pumpa je povezana sa natrijumovom, pošto obe pumpe imaju isti odnos prema ouabainu, nukleotidima, bikarbonatima. Kalijum se kreće samo u prisustvu natrijuma. Pretpostavlja se da je broj pumpi u svim ćelijama 3×10 6 i da svaka pumpa obavlja 200 pumpanja u minuti.


1 - stroma, 2 - voda, 3 - cerebrospinalna tečnost

Poslednjih godina otkrivena je uloga anjona u procesima sekrecije. Transport hlora će verovatno uključiti aktivnu pumpu, ali je primećen i pasivni transport. Formiranje HCO 3 iz CO 2 i H 2 O je od velikog značaja u fiziologiji likvora. Skoro sav bikarbonat u cerebrospinalnoj tečnosti dolazi iz CO2, a ne iz plazme. Ovaj proces je usko povezan sa transportom Na+. Koncentracija HCO3 tokom formiranja likvora je mnogo veća nego u plazmi, dok je sadržaj Cl nizak. Enzim karboanhidraza, koji služi kao katalizator za reakciju stvaranja i disocijacije ugljične kiseline:

Ovaj enzim igra važnu ulogu u izlučivanju cerebrospinalne tečnosti. Nastali protoni (H+) se zamjenjuju za natrijum koji ulazi u ćelije i prelazi u plazmu, a puferski anjoni prate natrijum u cerebrospinalnu tečnost. Acetazolamid (Diamox) je inhibitor ovog enzima. Značajno smanjuje stvaranje cerebrospinalne tekućine ili njen protok, ili oboje. Sa uvođenjem acetazolamida, metabolizam natrijuma se smanjuje za 50-100%, a njegova brzina je u direktnoj korelaciji sa brzinom stvaranja cerebrospinalne tekućine. Pregledom novoformiranog likvora uzetog direktno iz horoidnih pleksusa pokazuje se da je blago hipertonična zbog aktivne sekrecije natrijuma. To uzrokuje osmotski prijelaz vode iz plazme u cerebrospinalnu tekućinu. Sadržaj natrijuma, kalcijuma i magnezijuma u cerebrospinalnoj tečnosti je nešto veći nego u ultrafiltratu plazme, a koncentracija kalijuma i hlora je niža. Zbog relativno velikog lumena horoidalnih sudova, može se pretpostaviti učešće hidrostatskih sila u izlučivanju likvora. Oko 30% ove sekrecije možda neće biti inhibirano, što ukazuje na to da se proces odvija pasivno, kroz ependim, i zavisi od hidrostatskog pritiska u kapilarama.

Pojašnjeno je djelovanje nekih specifičnih inhibitora. Ouabain inhibira Na/K na način ovisan o ATPazi i inhibira transport Na+. Acetazolamid inhibira karboanhidrazu, a vazopresin izaziva spazam kapilara. Morfološki podaci detaljno opisuju ćelijsku lokalizaciju nekih od ovih procesa. Ponekad je transport vode, elektrolita i drugih spojeva u međućelijskim horoidalnim prostorima u stanju kolapsa (vidi sliku ispod). Kada je transport inhibiran, međućelijski prostori se šire zbog ćelijske kompresije. Ouabain receptori se nalaze između mikroresica na apikalnoj strani epitela i okrenuti su ka prostoru likvora.


Segal i Rollay priznaju da se formiranje cerebrospinalne tekućine može podijeliti u dvije faze (vidi sliku ispod). U prvoj fazi, voda i ioni se prenose u epitel vila zbog postojanja lokalnih osmotskih sila unutar ćelija, prema hipotezi Diamonda i Bosserta. Nakon toga, u drugoj fazi, ioni i voda se prenose, napuštajući međućelijske prostore, u dva smjera:

  • u ventrikule kroz apikalne zapečaćene kontakte i
  • intracelularno, a zatim kroz plazma membranu u ventrikule. Ovi transmembranski procesi vjerovatno zavise od natrijumove pumpe.


1 - normalan pritisak cerebrospinalne tečnosti,
2 - povećan pritisak cerebrospinalne tečnosti

Likvor u komorama, cerebelomedularnoj cisterni i subarahnoidnom prostoru nije isti po sastavu. To ukazuje na postojanje ekstrahoroidnih metaboličkih procesa u likvoru, ependimu i pijalnoj površini mozga. To je dokazano za K+. Iz horoidnih pleksusa cerebelomedularne cisterne smanjuju se koncentracije K+, Ca 2+ i Mg 2+, dok se koncentracija Cl - povećava. Cerebrospinalna tekućina iz subarahnoidalnog prostora ima nižu koncentraciju K+ od subokcipitalne. Koroidea je relativno propusna za K+. Kombinacija aktivnog transporta u cerebrospinalnoj tečnosti pri punoj zasićenosti i konstantne volumetrijske sekrecije likvora iz horoidnih pleksusa može objasniti koncentraciju ovih jona u novoformiranom likvoru.

Resorpcija i odliv cerebrospinalne tečnosti (CSF)

Konstantno stvaranje cerebrospinalne tečnosti ukazuje na postojanje kontinuirane resorpcije. U fiziološkim uslovima postoji ravnoteža između ova dva procesa. Formirana cerebrospinalna tečnost, koja se nalazi u komorama i subarahnoidnom prostoru, kao rezultat toga napušta sistem cerebrospinalne tečnosti (resorbuje se) uz učešće mnogih struktura:

  • arahnoidne resice (cerebralne i kičmene);
  • limfni sistem;
  • mozak (advencija cerebralnih sudova);
  • horoidni pleksusi;
  • kapilarni endotel;
  • arahnoidne membrane.

Arahnoidne resice se smatraju mjestom drenaže cerebrospinalne tekućine koja dolazi iz subarahnoidalnog prostora u sinuse. Davne 1705. Pahion je opisao arahnoidne granulacije, koje su kasnije nazvane po njemu - Pahionske granulacije. Kasnije su Key i Retzius ukazali na važnost arahnoidnih resica i granulacija za odliv cerebrospinalne tečnosti u krv. Osim toga, nema sumnje da u resorpciji likvora učestvuju membrane u kontaktu sa likvorom, epitel membrana likvora, moždani parenhim, perineuralni prostori, limfni sudovi i perivaskularni prostori. Učešće ovih dodatnih puteva je malo, ali oni postaju od velikog značaja kada su glavni putevi zahvaćeni patološkim procesima. Najveći broj arahnoidnih resica i granulacija nalazi se u području gornjeg sagitalnog sinusa. Posljednjih godina dobiveni su novi podaci o funkcionalnoj morfologiji arahnoidnih resica. Njihova površina čini jednu od barijera za odliv cerebrospinalne tečnosti. Površina resica je varijabilna. Na njihovoj površini se nalaze vretenaste ćelije dužine 40-12 µm i debljine 4-12 µm, sa apikalnim izbočinama u sredini. Površina ćelija sadrži brojne male izbočine ili mikrovile, a susjedne granične površine imaju nepravilne konture.

Ultrastrukturne studije pokazuju da su ćelijske površine podržane transverzalnim bazalnim membranama i submezotelnim vezivnim tkivom. Potonji se sastoji od kolagenih vlakana, elastičnog tkiva, mikrovila, bazalne membrane i mezotelnih ćelija sa dugim i tankim citoplazmatskim procesima. Na mnogim mjestima nema vezivnog tkiva, što rezultira stvaranjem praznih prostora koji su u vezi sa međućelijskim prostorima resica. Unutrašnji dio resica čini vezivno tkivo, bogato ćelijama koje štite labirint od međućelijskih prostora, koji služe kao nastavak arahnoidalnih prostora u kojima se nalazi likvor. Ćelije unutrašnjeg dijela resica imaju različite oblike i orijentacije i slične su mezotelnim stanicama. Izbočine obližnjih ćelija međusobno su povezane i čine jedinstvenu cjelinu. Ćelije unutrašnjeg dijela resica imaju dobro definiran Golgi mrežasti aparat, citoplazmatske fibrile i pinocitotične vezikule. Između njih ponekad postoje "lutajući makrofagi" i različite ćelije iz serije leukocita. Budući da ove arahnoidne resice ne sadrže krvne sudove ili živce, vjeruje se da se hrane cerebrospinalnom tekućinom. Površinske mezotelne ćelije arahnoidnih resica formiraju kontinuiranu membranu sa obližnjim ćelijama. Važna osobina ovih mezotelnih ćelija koje prekrivaju resice je da sadrže jednu ili više džinovskih vakuola, nabubrenih prema apikalnom delu ćelija. Vakuole su povezane s membranama i obično su prazne. Većina vakuola je konkavna i direktno je povezana sa cerebrospinalnom tečnošću koja se nalazi u submezotelnom prostoru. Kod značajnog dijela vakuola bazalni otvori su veći od apikalnih, a ove konfiguracije se tumače kao međućelijski kanali. Zakrivljeni vakuolarni transcelularni kanali funkcionišu kao jednosmerni ventil za odliv cerebrospinalne tečnosti, odnosno u pravcu od baze prema apeksu. Struktura ovih vakuola i kanala je dobro proučavana korišćenjem obeleženih i fluorescentnih supstanci, koje se najčešće ubrizgavaju u cerebelomedularnu cisternu. Transcelularni kanali vakuola su dinamički sistem pora koji igra glavnu ulogu u resorpciji (odlivanju) cerebrospinalne tečnosti. Smatra se da su neki od navodnih vakuolnih transcelularnih kanala, u suštini, prošireni međućelijski prostori, koji su takođe od velikog značaja za odliv likvora u krv.

Davne 1935. Weed je na osnovu preciznih eksperimenata ustanovio da dio likvora teče kroz limfni sistem. Poslednjih godina bilo je više izveštaja o drenaži cerebrospinalne tečnosti kroz limfni sistem. Međutim, ovi izvještaji su ostavili otvorenim pitanje koliko se cerebrospinalne tekućine apsorbira i koji su mehanizmi uključeni. 8-10 sati nakon ubrizgavanja obojenog albumina ili obilježenih proteina u cerebelomedularnu cisternu, 10 do 20% ovih supstanci može se naći u limfi formiranoj u vratnoj kičmi. Kako intraventrikularni pritisak raste, povećava se drenaža kroz limfni sistem. Prethodno se pretpostavljalo da postoji resorpcija cerebrospinalne tekućine kroz kapilare mozga. Kompjuterizovanom tomografijom je utvrđeno da su periventrikularne zone smanjene gustine često uzrokovane protokom likvora vanćelijskim putem u moždano tkivo, posebno uz povećanje pritiska u komorama. Kontroverzno je da li je većina cerebrospinalne tekućine koja ulazi u mozak resorpcija ili posljedica dilatacije. Dolazi do curenja cerebrospinalne tečnosti u intercelularni cerebralni prostor. Makromolekule koje se ubrizgavaju u ventrikularni cerebrospinalnu tečnost ili subarahnoidalni prostor brzo dospevaju u ekstracelularni medularni prostor. Horoidni pleksusi se smatraju mjestom oticanja cerebrospinalne tekućine, jer su obojeni nakon ubrizgavanja boje s povećanjem osmotskog tlaka cerebrospinalne tekućine. Utvrđeno je da horoidni pleksusi mogu resorbirati oko 1/10 likvora koji se izlučuju njima. Ovaj odliv je izuzetno važan kada je intraventrikularni pritisak visok. Pitanja apsorpcije cerebrospinalne tekućine kroz kapilarni endotel i arahnoidnu membranu ostaju kontroverzna.

Mehanizam resorpcije i odliva cerebrospinalne tečnosti (CSF)

Za resorpciju cerebrospinalne tekućine važan je niz procesa: filtracija, osmoza, pasivna i olakšana difuzija, aktivni transport, vezikularni transport i drugi procesi. Odliv cerebrospinalne tečnosti može se okarakterisati kao:

  1. jednosmjerno curenje kroz arahnoidne resice kroz mehanizam ventila;
  2. resorpcija, koja nije linearna i zahtijeva određeni pritisak (obično 20-50 mm vodenog stupca);
  3. neka vrsta prolaza iz cerebrospinalne tečnosti u krv, ali ne i obrnuto;
  4. Resorpcija likvora, koja se smanjuje kako se ukupni sadržaj proteina povećava;
  5. resorpcija istom brzinom za molekule različitih veličina (na primjer, molekule manitola, saharoze, inzulina, dekstrana).

Brzina resorpcije cerebrospinalne tekućine u velikoj mjeri ovisi o hidrostatskim silama i relativno je linearna pri pritiscima u širokom fiziološkom rasponu. Postojeća razlika u pritisku između likvora i venskog sistema (od 0,196 do 0,883 kPa) stvara uslove za filtraciju. Velika razlika u sadržaju proteina u ovim sistemima određuje vrednost osmotskog pritiska. Welch i Friedman sugeriraju da arahnoidne resice funkcioniraju kao zalisci i određuju kretanje tekućine u smjeru od cerebrospinalne tekućine do krvi (u venske sinuse). Veličine čestica koje prolaze kroz resice su različite (koloidno zlato veličine 0,2 mikrona, čestice poliestera do 1,8 mikrona, crvena krvna zrnca do 7,5 mikrona). Velike čestice ne prolaze. Mehanizam oticanja cerebrospinalne tečnosti kroz različite strukture je različit. U zavisnosti od morfološke strukture arahnoidnih resica, postoji nekoliko hipoteza. Prema zatvorenom sistemu, arahnoidne resice su prekrivene endotelnom membranom i postoje zapečaćeni kontakti između endotelnih ćelija. Zbog prisustva ove membrane dolazi do resorpcije likvora uz učešće osmoze, difuzije i filtracije niskomolekularnih supstanci, a za makromolekule - aktivnim transportom kroz barijere. Međutim, prolaz nekih soli i vode ostaje slobodan. Za razliku od ovog sistema, postoji otvoreni sistem, prema kojem arahnoidne resice imaju otvorene kanale koji povezuju arahnoidnu membranu sa venskim sistemom. Ovaj sistem uključuje pasivni prolaz mikromolekula, čineći apsorpciju cerebrospinalne tečnosti potpuno zavisnom od pritiska. Tripathi je predložio drugi mehanizam apsorpcije cerebrospinalne tečnosti, koji je, u suštini, dalji razvoj prva dva mehanizma. Pored najnovijih modela, postoje i dinamički procesi transendotelne vakuolacije. U endotelu arahnoidnih resica privremeno se formiraju transendotelni ili transmezotelni kanali, kroz koje cerebrospinalna tekućina i njene sastavne čestice otiču iz subarahnoidalnog prostora u krv. Efekat pritiska na ovaj mehanizam nije jasan. Novo istraživanje podržava ovu hipotezu. Vjeruje se da se s povećanjem pritiska povećava broj i veličina vakuola u epitelu. Vakuole veće od 2 µm su rijetke. Kompleksnost i integracija se smanjuju sa velikim razlikama u pritisku. Fiziolozi vjeruju da je resorpcija cerebrospinalne tekućine pasivan proces ovisan o pritisku koji se odvija kroz pore veće od veličine proteinskih molekula. Cerebrospinalna tekućina prolazi iz distalnog subarahnoidalnog prostora između stanica koje formiraju stromu arahnoidnih resica i stiže do subendotelnog prostora. Međutim, endotelne stanice su pinocitno aktivne. Prolazak cerebrospinalne tekućine kroz endotelni sloj je također aktivan transcelulozni proces pinocitoze. Prema funkcionalnoj morfologiji arahnoidnih resica, prolaz cerebrospinalne tekućine odvija se kroz vakuolarne transcelulozne kanale u jednom smjeru od baze do vrha. Ako je pritisak u subarahnoidnom prostoru i sinusima isti, arahnoidne izrasline su u kolapsu, stromalni elementi su gusti, a endotelne ćelije imaju sužene međućelijske prostore, na mjestima ukrštanim specifičnim ćelijskim vezama. U subarahnoidnom prostoru pritisak raste samo na 0,094 kPa, odnosno 6-8 mm vode. Art., izrasline se povećavaju, stromalne ćelije se odvajaju jedna od druge i endotelne ćelije izgledaju manjeg volumena. Međućelijski prostor je proširen i endotelne ćelije pokazuju povećanu aktivnost za pinocitozu (vidi sliku ispod). Kod velike razlike u pritisku promjene su izraženije. Transcelularni kanali i prošireni međućelijski prostori omogućavaju prolaz cerebrospinalne tečnosti. Kada su arahnoidne resice u stanju kolapsa, prodiranje sastojaka plazme u cerebrospinalnu tečnost je nemoguće. Mikropinocitoza je takođe važna za resorpciju cerebrospinalne tečnosti. Prolazak proteinskih molekula i drugih makromolekula iz cerebrospinalne tekućine subarahnoidalnog prostora u određenoj mjeri ovisi o fagocitnoj aktivnosti arahnoidnih stanica i “lutajućih” (slobodnih) makrofaga. Međutim, malo je vjerovatno da se čišćenje ovih makročestica vrši samo fagocitozom, jer je to prilično dugotrajan proces.



1 - arahnoidalne resice, 2 - horoidalni pleksus, 3 - subarahnoidalni prostor, 4 - moždane ovojnice, 5 - bočna komora.

U posljednje vrijeme sve je više pristalica teorije aktivne resorpcije cerebrospinalne tekućine kroz horoidni pleksus. Tačan mehanizam ovog procesa nije jasan. Međutim, pretpostavlja se da se tok cerebrospinalne tečnosti odvija prema pleksusima iz subependimalnog polja. Nakon toga, cerebrospinalna tekućina ulazi u krv kroz fenestrirane vile kapilare. Ependimalne ćelije sa mesta resorpcionih transportnih procesa, odnosno specifične ćelije, posrednici su za prenos supstanci iz ventrikularnog likvora kroz vilozni epitel u kapilarnu krv. Resorpcija pojedinih komponenti likvora zavisi od koloidnog stanja supstance, njene rastvorljivosti u lipidima/vodi, njenog odnosa sa specifičnim transportnim proteinima, itd. Postoje specifični transportni sistemi za prenos pojedinih komponenti.

Brzina formiranja cerebrospinalne tečnosti i resorpcije likvora


Do sada su korištene metode za proučavanje brzine stvaranja likvora i resorpcije likvora (kontinuirana lumbalna drenaža; ventrikularna drenaža, koja se koristi i za mjerenje vremena potrebnog za obnavljanje pritiska nakon što likvor iscuri iz subarahnoidalnog prostora) kritikovano zbog toga što nisu fiziološki. Metoda ventrikulocisternalne perfuzije koju su uveli Pappenheimer et al nije bila samo fiziološka, ​​već je omogućavala i istovremenu procjenu formiranja i Resorpcija likvora. Brzina formiranja i resorpcije likvora određena je pri normalnom i patološkom pritisku likvora. Formiranje CSF ne zavisi od kratkoročnih promena ventrikularnog pritiska, njegov odliv je linearno povezan sa njim. Sekrecija cerebrospinalne tečnosti opada sa produženim porastom pritiska kao rezultat promena u horoidalnom krvotoku. Pri pritiscima ispod 0,667 kPa, resorpcija je nula. Pri pritisku između 0,667 i 2,45 kPa, odnosno 68 i 250 mm vode. Art. U skladu s tim, brzina resorpcije cerebrospinalne tekućine je direktno proporcionalna pritisku. Cutler i saradnici proučavali su ove pojave kod 12 djece i utvrdili da je to pri pritisku od 1,09 kPa, odnosno 112 mm vode. čl., brzina formiranja i brzina odliva cerebrospinalne tekućine su jednake (0,35 ml/min). Segal i Pollay tvrde da čovjek ima brzinu formiranje cerebrospinalne tečnosti dostiže 520 ml/min. Još uvijek se malo zna o utjecaju temperature na formiranje likvora. Eksperimentalno akutno izazvano povećanje osmotskog pritiska inhibira, a smanjenje osmotskog pritiska pojačava sekreciju cerebrospinalne tečnosti. Neurogena stimulacija adrenergičkih i kolinergičkih vlakana koja inerviraju koroidne krvne sudove i epitel imaju različite efekte. Kod stimulacije adrenergičkih vlakana koja izlaze iz gornjeg cervikalnog simpatičkog ganglija, protok likvora se naglo smanjuje (za skoro 30%), a denervacija ga povećava za 30%, a da se pritom ne mijenja protok krvi u horoidu.

Stimulacija kolinergičkog puta povećava stvaranje cerebrospinalne tekućine do 100% bez ometanja horoidalnog krvotoka. Nedavno je razjašnjena uloga cikličkog adenozin monofosfata (cAMP) u prolazu vode i otopljenih materija kroz ćelijske membrane, uključujući njegov efekat na horoidni pleksus. Koncentracija cAMP zavisi od aktivnosti adenil ciklaze, enzima koji katalizuje stvaranje cAMP iz adenozin trifosfata (ATP) i aktivnosti njegove metabolizacije u neaktivni 5-AMP uz učešće fosfodiesteraze, ili dodavanjem inhibitorne podjedinice specifične protein kinaze na njega. cAMP djeluje na brojne hormone. Toksin kolere, koji je specifični stimulator adenil ciklaze, katalizira stvaranje cAMP-a, a u horoidnom pleksusu uočeno je petostruko povećanje ove tvari. Ubrzanje uzrokovano toksinom kolere može se blokirati lijekovima iz grupe indometacina, koji su antagonisti prostaglandina. Kontroverzno je koji specifični hormoni i endogeni agensi stimulišu stvaranje cerebrospinalne tečnosti na putu do cAMP-a i koji je njihov mehanizam delovanja. Postoji opsežna lista lijekova koji utiču na stvaranje cerebrospinalne tekućine. Neki lijekovi utiču na stvaranje cerebrospinalne tekućine ometajući ćelijski metabolizam. Dinitrofenol utiče na oksidativnu fosforilaciju u horoidnom pleksusu, furosemid utiče na transport hlora. Diamox smanjuje brzinu formiranja kičmene moždine inhibiranjem karboanhidraze. Također uzrokuje prolazno povećanje intrakranijalnog tlaka, oslobađajući CO 2 iz tkiva, što rezultira povećanjem cerebralnog krvotoka i volumena krvi u mozgu. Srčani glikozidi inhibiraju Na- i K-ovisnost ATPaze i smanjuju lučenje cerebrospinalne tekućine. Gliko- i mineralokortikoidi gotovo da nemaju utjecaja na metabolizam natrijuma. Povećanje hidrostatskog pritiska utiče na procese filtracije kroz kapilarni endotel pleksusa. Kada se osmotski tlak povećava uvođenjem hipertonične otopine saharoze ili glukoze, formiranje likvora se smanjuje, a kada se osmotski tlak smanjuje uvođenjem vodenih otopina, povećava se, jer je taj odnos gotovo linearan. Kada se osmotski pritisak promeni uvođenjem 1% vode, brzina formiranja likvora je poremećena. Kada se hipertonične otopine daju u terapijskim dozama, osmotski tlak se povećava za 5-10%. Intrakranijalni pritisak mnogo više zavisi od cerebralne hemodinamike nego od brzine stvaranja cerebrospinalne tečnosti.

Cirkulacija cerebrospinalne tečnosti (CSF)

Dijagram cirkulacije CSF (označeno strelicama):
1 - kičmeni koren, 2 - horoidalni pleksus, 3 - horoidalni pleksus, 4 - III komora, 5 - horoidalni pleksus, 6 - gornji sagitalni sinus, 7 - arahnoidna granula, 8 - lateralna komora, 9 - cerebralna hemisfera 1lume

Cirkulacija cerebrospinalne tečnosti (CSF) prikazana je na gornjoj slici.

Gornji video će također biti edukativan.

Cerebrospinalnu tekućinu proizvode horoidni pleksusi ventrikula mozga, koji imaju žljezdanu strukturu, a apsorbiraju je vene pia mater mozga putem pahionskih granulacija. Procesi proizvodnje i apsorpcije cerebrospinalne tečnosti odvijaju se kontinuirano, obezbeđujući 4-5 puta razmenu tokom dana. U kranijalnoj šupljini postoji relativna insuficijencija apsorpcije likvora, au intravertebralnom kanalu prevladava relativna insuficijencija proizvodnje likvora.

Kada je dinamika likvora između mozga i kičmene moždine poremećena, dolazi do prekomerne akumulacije likvora u šupljini lubanje, a u subarahnoidnom prostoru kičmene moždine tečnost se brzo apsorbuje i koncentriše. Cirkulacija likvora zavisi od pulsiranja krvnih sudova mozga, disanja, pokreta glave, intenziteta proizvodnje i apsorpcije samog likvora.

Obrazac cirkulacije CSF: lateralne komore mozgaMonroe (interventrikularne) otvoreIII ventrikula mozgaakvedukt mozgaIV ventrikula mozgaLuschkina (lateralna) i Magendiejeva (srednja) komora

 cisterna magna i spoljašnji subarahnoidalni prostor GM,

 centralni kanal i subarahnoidalni prostor SM  terminalna cisterna SM.

Funkcije cerebrospinalne tečnosti:

    mehanička zaštita mozga,

    apsorpcija promjena osmotskog tlaka;

    održavanje trofičkih i metaboličkih procesa između krvi i mozga

Sastav cerebrospinalne tečnosti

1. Pritisak:

    norma- 150-200 mm.H 2 O.st – u ležećem položaju, 300-400 mm.H 2 O.st – sedeći;

    CSF hipertenzija(do 300-400 mm vodenog stupca i više);

    alkoholna hipotenzija;

2.Boja:

    norma- bezbojna („kao suza“);

    sa seroznim meningitisom – bezbojan, opalescentan;

    s gnojnim meningitisom - zamućen, zelenkast (žućkast);

    kod tumora – zamućen, ksantohrom;

    u slučaju subarahnoidalnog krvarenja, obojen je krvlju („svježe“) ili žućkasto („staro“).

3. Broj ćelija i ukupni proteini:

    norma:citoza– manje od 5*10 6 /l (ventrikularno – 0-1, lumbalno – 2-3); ukupni proteini– 0,15-0,45 g/l (ventrikularni – 0,12-0,20 g/l, lumbalni – 0,22-0,33 g/l);

    pleocitoza– povećanje broja ćelija u cerebrospinalnoj tečnosti;

    hiperproteinorahija– povećana koncentracija proteina u cerebrospinalnoj tečnosti;

    ćelijsko-proteinska disocijacija– relativna prevlast povećanja broja ćelija (jednokratno od norme) nad koncentracijom proteina (jednokratno od norme), tj. n/ m >> 1 ; karakteristika zarazne lezije;

    disocijacija protein-ćelija– relativna prevlast koncentracije proteina (puta norme) nad povećanjem broja ćelija (puta norme), tj. n/ m << 1 ; karakteristika tumorskih lezija;

4. Glukoza:

    norma– 2,78-3,89 mmol/l (1/2 glukoze u krvi),

    hipoglikorahija– smanjenje koncentracije glukoze u cerebrospinalnoj tekućini, uočeno kada se glukoza kao energetska tvar koristi ne samo od strane mozga, već i od infektivnog agensa (bakterija, gljivica);

5. Ostali biohemijski pokazatelji:

    hloridi– 120-128 mmol/l,

    kreatinin – 44-95 µmol/l, urea – 1,0-5,5 mmol/l,

    mokraćna kiselina – 5,9-17,4 mmol/l,

    natrijum – 135-155 mmol/l, kalijum – 2,6-2,9 mmol/l, kalcijum – 0,9-1,35 mmol/l, bikarbonat – 22-25 mmol/l.

6. Bakterijska kontaminacija:

    norma– sterilno,

    bakteriološki i serološki pregled (detekcija patogena), uključujući ekspresna dijagnostika (metoda fluorescentnih antitijela i kontra imunoforeze)

    osjetljivost otkriveno flora na razne antibiotike.

Alkoholni sindromi

1. Ćelijsko-proteinska disocijacija:

    Neutrofilnapleocitoza (uvek sa niskim nivoom glukoze):

1) Meningitis:

- bakterijski,

- amebna;

- hemijski;

- virusnou ranoj fazi zauške i limfocitni koriomeningitis

3) Apsces mozga.

    Limfocitnipleocitoza sa normalnim nivoom glukoze:

1) Meningitis:

- virusna;

- spirohetozno(meningovaskularni sifilis, borelioza);

- klamidijske (ornitoze);

- gljivičneu ranoj fazi.

2) Parameningealne infekcije (otitis, etmoiditis);

3) Vaskulitis kod sistemskih reumatskih oboljenja.

    Limfocitna pleocitoza sa niskim nivoom glukoze:

1) Menigitis:

- tuberkuloza; bruceloza;

- leptospiroza;

- gljivične;

- bakterijskinedovoljno tretiran ;

3) Neurosarkoidoza, karcinomatoza;

4) Subarahnoidalno krvarenje („staro“).

Cerebrospinalna tekućina se izlučuje u komore mozga ćelijama horoidnog pleksusa. Iz lateralnih ventrikula cerebrospinalna tekućina teče u treću komoru kroz Monrov interventrikularni foramen, a zatim prolazi kroz cerebralni akvadukt u četvrtu komoru.

Odatle cerebrospinalna tečnost teče u subarahnoidalni prostor kroz srednji otvor (foramen Magendie) i lateralni otvor četvrte komore (cirkulacija tečnosti u centralnom kanalu kičmene moždine može se zanemariti).

Dio cerebrospinalne tekućine subarahnoidalnog prostora drenira kroz foramen magnum i stiže u lumbalnu cisternu u roku od 12 sati. Iz subarahnoidnog prostora donje površine mozga, cerebrospinalna tekućina se usmjerava prema gore kroz zarez tentorijuma malog mozga i ispire površinu moždanih hemisfera. Likvor se zatim reapsorbuje u krv kroz granulacije arahnoidne membrane - pahionske granulacije.

Pahionske granulacije su izrasline arahnoidne membrane veličine glave igle, koje strše u zidove prekrivenih dura glavnih cerebralnih sinusa, posebno u gornji sagitalni sinus, u koji se otvaraju male venske lakune. U epitelnim ćelijama arahnoidne membrane, cerebrospinalna tečnost se transportuje u velikim vakuolama.

Međutim, oko četvrtine cerebrospinalne tekućine možda neće doći do gornjeg sagitalnog sinusa. Dio cerebrospinalne tekućine teče u pahionske granulacije, koje se projektuju u kičmene vene koje izlaze iz intervertebralnih otvora; drugi dio prelazi u limfne žile adventicije arterija regije donje površine mozga i epineurijum kranijalnih živaca. Ove limfne žile su usmjerene na cervikalne limfne čvorove.

Dnevno se proizvodi oko 500 ml likvora (300 ml luče ćelije horoidnog pleksusa, 200 ml se formira iz drugih izvora, koji su opisani u poglavlju 5). Ukupna zapremina likvora u telu odrasle osobe je 150 ml (25 ml cirkuliše u ventrikularnom sistemu i 100 ml u subarahnoidnom prostoru). Potpuna nadoknada likvora se dešava dva do tri puta dnevno. Poremećaj izmjene likvora može dovesti do njenog nakupljanja u ventrikularnom sistemu - hidrocefalusa.

Cerebrospinalna tekućina prolazi iz subarahnoidnog prostora u mozak kroz perivaskularne prostore arteriola; pored toga, na ovom nivou ili na nivou kapilarnog endotela, cerebrospinalna tečnost je u stanju da prodre u stabljike astrocita, čije ćelije formiraju čvrste spojeve. Astrociti učestvuju u formiranju krvno-moždane barijere. Krvno-moždana barijera je aktivan proces koji se odvija kroz vodoprovodne kanale (pore) u plazma membrani stopala astrocita uz učešće integralnog membranskog proteina - akvaporina-4 (AQP4). Tečnost se oslobađa iz astrocita i kreće u ekstracelularni prostor, gde se meša sa tečnošću koja se oslobađa kao rezultat metaboličkih procesa moždanih ćelija.

Ova međućelijska tečnost „curi“ u mozgu i prolazi kroz površinu ependima ili pia mater u cerebrospinalnu tečnost, u kojoj se uklanja iz mozga u krvotok. U slučaju insuficijencije limfnog sistema mozga, krvno-moždana barijera osigurava isporuku različitih signalnih molekula koje luče neuroni ili glijalne stanice, kao i eliminaciju otopljenih supstanci tkiva i održavanje osmotske ravnoteže u mozgu.

A) Hidrocefalus(od grčkog hydor-voda i kephale-glava) - prekomjerno nakupljanje cerebrospinalne tekućine u ventrikularnom sistemu mozga. U većini slučajeva, hidrocefalus nastaje kao rezultat nakupljanja cerebrospinalne tekućine u ventrikularnom sistemu mozga (uzrokujući njihovu dilataciju) ili u subarahnoidnom prostoru; Izuzetak su stanja u kojima je uzrok prekomjerne proizvodnje cerebrospinalne tekućine rijetka bolest - papilomatoza ćelija horoidnog pleksusa. [Izraz “hidrocefalus” se ne koristi za opisivanje prekomerne “akumulacije” cerebrospinalne tečnosti u ventrikularnom sistemu i subarahnoidnom prostoru u senilnoj atrofiji mozga; ponekad se u ovim slučajevima koristi izraz “ex vacuo hidrocefalus” (tj. mješoviti zamjenski hidrocefalus).]

Hidrocefalus može biti uzrokovan patološkim procesima kao što su upale, tumori, traume i promjene u osmolarnosti cerebrospinalne tekućine.U tom smislu, uobičajena teorija da uzrok hidrocefalusa može biti isključivo kršenje izlaznog trakta likvora je previše pojednostavljena i vjerovatno netačno.

Hidrocefalus kod djece se opaža s Arnold-Chiari malformacijom, u kojoj je mali mozak djelomično uronjen u kičmeni kanal kao rezultat nedovoljnog razvoja stražnje lobanjske jame u prenatalnom periodu. Ako se ne liječi, dječja glava može dostići veličinu fudbalske lopte, a hemisfere mozga stanjiti se do debljine lista papira. Hidrocefalus je gotovo uvijek povezan sa spinom bifidom.

Ozbiljna oštećenja mozga mogu se spriječiti samo ranim liječenjem. Pokušaj liječenja sastoji se od ugradnje katetera ili šanta, čiji je jedan kraj uronjen u lateralnu komoru, a drugi u unutrašnju jugularnu venu.

Akutni ili subakutni hidrocefalus može se razviti kada je odliv poremećen kao rezultat pomaka malog mozga u foramen magnum ili opstrukcije četvrte komore neoplazmom koja zauzima prostor (tumor ili hematom)/

Uzrok hidrocefalusa u bilo kojoj starosnoj skupini može biti upala moždanih membrana – meningitis. Jedna od patogenetskih komponenti razvoja hidrocefalusa može biti leptomeningealna adhezija, koja remeti cirkulaciju cerebrospinalne tečnosti na nivou odliva iz ventrikula, cerebelarnog tentorijumskog zareza i/ili pahionskih granulacija.

b) Sažetak. Cerebrospinalna tečnost. U predjelu donje površine mozga, likvor se nalazi u cerebralnoj cisterni magna, pontinskoj cisterni, interpeduncular cisterni i cirkumferencijalnoj cisterni. Osim toga, cerebrospinalna tekućina se širi duž omotača optičkog živca; povećan intrakranijalni pritisak može uzrokovati kompresiju centralne retinalne vene, što dovodi do edema papile. Tekalna vreća kičmene moždine okružuje kičmenu moždinu i završava se na nivou drugog sakralnog pršljena. Korijeni kičmenih živaca nalaze se u lumbalnoj cisterni, u području koje se radi lumbalna punkcija.

Cerebrospinalna tečnost koju luči horoidni pleksus ulazi u subarahnoidalni prostor kroz tri otvora četvrte komore; dio prelazi u lumbalnu cisternu. Zaobilazeći usjek tentorium cerebelluma i subarahnoidalni prostor mozga, cerebrospinalna tekućina se usmjerava prema gore do gornjeg sagitalnog sinusa i njegovih lakuna kroz Pahionove granulacije. Poremećaj cirkulacije cerebrospinalne tečnosti može dovesti do hidrocefalusa.

Edukativni video - anatomija sistema cerebrospinalne tečnosti i ventrikula mozga



Likvor ili likvor je tečni medij koji ima važnu funkciju u zaštiti sive i bijele tvari od mehaničkih oštećenja. Centralni nervni sistem je potpuno uronjen u tekućinu, pri čemu se svi potrebni nutrijenti prenose do tkiva i završetaka, a uklanjaju se i produkti metabolizma.

Šta je cerebrospinalna tečnost

Liker pripada grupi tkiva čiji je sastav sličan limfi ili viskoznoj bezbojnoj tečnosti. Likvor sadrži veliki broj hormona, vitamina, organskih i neorganskih jedinjenja, kao i određeni procenat soli hlora, proteina i glukoze.

Ova kompozicija pruža optimalne uslove za obavljanje dva osnovna zadatka:

Sastav i količinu cerebrospinalne tečnosti ljudski organizam održava na istom nivou. Bilo kakve promjene: povećanje volumena cerebrospinalne tekućine, pojava inkluzija krvi ili gnoja, ozbiljni su pokazatelji koji ukazuju na prisutnost patoloških poremećaja i upalnih procesa.

Gdje se nalazi piće?

Ependimalne ćelije horoidnog pleksusa su “tvornica” koja čini 50-70% ukupne proizvodnje likvora. Cerebrospinalna tečnost se zatim spušta do lateralnih komora i Monrovog foramena i prolazi kroz Sylviusov akvadukt. CSF izlazi kroz subarahnoidalni prostor. Kao rezultat, tečnost obavija i ispunjava sve šupljine.

Iz subarahnoidalnog prostora, cerebrospinalna tekućina teče kroz arahnoidne resice, fisure dura mater kičmene moždine i pahionske granulacije. U normalnom stanju pacijent ima stalnu cirkulaciju cerebrospinalne tečnosti. Zbog ozljeda, adhezija, zaraznih bolesti poremećena je provodljivost u izlaznom traktu. Kao rezultat toga, uočava se hidrocefalus, masivna krvarenja i upalni procesi koji migriraju u područje ljudske glave. Poremećaji odliva ozbiljno utiču na funkcionisanje celog organizma.

Koja je funkcija tečnosti?

Cerebrospinalnu tečnost formiraju hemijska jedinjenja, uključujući: hormone, vitamine, organska i neorganska jedinjenja. Rezultat je optimalan nivo viskoznosti. Alkohol stvara uslove za ublažavanje fizičkog uticaja dok osoba obavlja osnovne motoričke funkcije, a takođe sprečava kritična oštećenja mozga od snažnih udara.

Funkcionalnost cerebrospinalne tekućine nije ograničena samo na svojstva apsorpcije udara. Cerebrospinalna tekućina sadrži elemente koji mogu obraditi dolaznu krv i razgraditi je na korisne hranjive tvari. Istovremeno se proizvodi dovoljna količina hormona koji utiču na reproduktivni, endokrini i drugi sistem.

Proučavanje cerebrospinalne tekućine omogućava utvrđivanje ne samo postojećih patologija, već i predviđanje mogućih komplikacija.

Sastav cerebrospinalne tečnosti, od čega se sastoji

Analiza cerebrospinalne tekućine pokazuje da sastav ostaje gotovo nepromijenjen, što omogućava precizno dijagnosticiranje mogućih odstupanja od norme, kao i određivanje vjerojatne bolesti. Uzorkovanje likvora je jedna od najinformativnijih dijagnostičkih metoda.

Cerebrospinalna tečnost ima sledeće karakteristike i sastav:

  1. Gustina 1003-1008 g/l.
  2. Citoza u cerebrospinalnoj tekućini nije veća od tri ćelije po 3 μL.
  3. Glukoza 2,78-3,89 mmol/l.
  4. Soli hlora 120-128 mmol/l.
  5. Određivanje proteina u tečnosti u rasponu od 2,78-3,89 mmol/l.
Normalni nivoi likvora dozvoljavaju manja odstupanja od norme zbog modrica i povreda.

Metode za proučavanje cerebrospinalne tečnosti

Sakupljanje ili punkcija cerebrospinalne tečnosti i dalje je najinformativnija metoda pregleda. Proučavanjem fizičkih i hemijskih svojstava tečnosti moguće je dobiti potpunu kliničku sliku zdravstvenog stanja pacijenta.

Postoji pet glavnih dijagnostičkih procedura:

Proučavanje eksudata i transudata cerebrospinalne tekućine kroz punkciju nosi određeni rizik i prijetnju zdravlju pacijenta. Zahvat se izvodi isključivo u bolnici od strane kvalifikovanog osoblja.

Lezije cerebrospinalne tekućine i njihove posljedice

Upala likvora, promjene u hemijskom i fiziološkom sastavu, povećanje volumena - sve ove deformacije direktno utiču na dobrobit pacijenta i pomažu liječenju da utvrdi moguće komplikacije.

Koji patološki procesi pomažu u određivanju metoda istraživanja?

Postoji nekoliko glavnih razloga za slab otjecanje tekućine i promjene u njenom sastavu. Da bi se odredio katalizator deformacije, bit će potrebna diferencijalna dijagnostika.

Liječenje upalnih procesa u cerebrospinalnoj tekućini

Nakon prikupljanja punkcije, liječnik utvrđuje uzrok upalnog procesa i propisuje tijek terapije, čiji je glavni cilj uklanjanje katalizatora odstupanja.

Ako je volumen mali, dodatno se pregledaju mjesta na kojima se stvara likvor (MRI, CT), a radi se i citološka analiza kako bi se isključila mogućnost onkoloških tumora.

Ako postoji infektivni uzrok upale, propisuje se kurs antibiotika, kao i lijekovi koji snižavaju temperaturu i normaliziraju metabolizam. U svakom slučaju, za efikasnu terapiju potrebno je precizno odrediti katalizator upale, kao i moguće komplikacije.

Cerebrospinalna tekućina ispunjava subarahnoidalni prostor, odvaja mozak od lubanje, okružujući mozak vodenom sredinom.

Sastav soli cerebrospinalne tekućine sličan je sastavu morske vode. Zapazimo ne samo mehaničku zaštitnu funkciju tekućine za mozak i krvne žile koje leže u njoj, već i njenu ulogu kao specifične unutrašnje sredine neophodne za normalno funkcioniranje nervnog sistema.

Budući da su njegovi proteini i glukoza izvor energije za normalno funkcioniranje moždanih stanica, a limfociti sprječavaju prodor infekcije.

Tečnost se formira iz žila horoidnih pleksusa ventrikula, prolazeći kroz krvno-moždanu barijeru, i obnavlja se 4-5 puta dnevno. Iz lateralnih ventrikula tečnost teče kroz interventrikularni foramen u treću komoru, zatim kroz cerebralni akvadukt u četvrtu komoru (slika 1).

Rice. 1.: 1 - Pahion granulacije; 2 - bočna komora; 3 - hemisfera mozga; 4 - mali mozak; 5 - četvrta komora; b - kičmena moždina; 7 - subarahnoidalni prostor; 8 - korijeni kičmenog živca; 9 - horoidni pleksus; 10 - tentorijum malog mozga; 13 - gornji sagitalni sinus.

Cirkulacija tečnosti potiče pulsiranje cerebralnih arterija. Iz četvrte komore tečnost se usmjerava kroz otvore Lushke i Magendii u subarahnoidalni prostor, ispirajući kičmenu moždinu i mozak. Usled ​​pokreta kičme, cerebrospinalna tečnost teče naniže iza kičmene moždine, a prema gore kroz centralni kanal i ispred kičmene moždine. Iz subarahnoidalnog prostora, cerebrospinalna tečnost se kroz Pahionove granulacije, granulationes arachnoidales (Pachioni), filtrira u lumen sinusa dura mater, u vensku krv (slika 2).

Rice. 2.: 1 - koža glave; 2 - kost lubanje; 3 - dura mater; 4 - subduralni prostor; 5 - arahnoidna membrana; 6 - subarahnoidalni prostor; 7 - pia mater; 8 - venski maturant; 9 - gornji sagitalni sinus; 10 - Pahionske granulacije; 11 - cerebralni korteks.

Tenkovi- ovo su produžeci subarahnoidalnog prostora. Razlikuju se sljedeći rezervoari:

  • Cisterna cerebellomedullaris, cisterna magna - stražnja cerebellocerebralna cisterna, cisterna magna;
  • Cisterna cerebellomedullaris lateralis - lateralna cerebellocerebralna cisterna;
  • Cisterna fossae lateralis cerebri - cisterna lateralne jame velikog mozga;
  • Cisterna chiasmatica - cisterna krsta;
  • Cisterna interpeduncularis - međupedunkularna cisterna;
  • Cisterna ambiens - cisterna koja obavija (na dnu jaza između okcipitalnih režnjeva hemisfera i gornje površine malog mozga);
  • Cisterna pericallosa - perikalosalna cisterna (duž gornje površine i koljena corpus callosum);
  • Cisterna pontocerebellaris - cerebellopontinska cisterna;
  • Cisterna laminae terminalis - cisterna terminalne ploče (od prednjeg ruba hijazme, arahnoidna membrana se slobodno širi na donju površinu ravnog girusa i do olfaktornih lukovica);
  • Cisterna quadrigeminalis (cisterna venae magnae cerebri) - kvadrigeminalna cisterna (cisterna velike moždane vene);
  • Cisterna pontis - nalazi se prema glavnom žlijebu mosta.